Título: Estudo dos efeitos da sinalização MyD88-dependente intrínseca ao linfócito B sobre a diferenciação in vitro e homeostase periférica de células T reguladoras CD4+Foxp3+
Aluno: Carolina Paulino Pacini
Orientador(es): Prof. Fabio Barrozo Canto
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As células T reguladoras CD4+CD25+Foxp3+ (Treg) são imprescindíveis para o estabelecimento da tolerância periférica. Essa população pode ser originada tanto no timo quanto no ambiente pós-tímico, e estudos recentes revelaram a importância das células Treg periféricas no controle da homeostase intestinal e da auto-tolerância. No compartimento periférico, linfócitos T convencionais CD4+CD25-Foxp3-(Tconv) podem ser induzidos a expressar o fator de transcrição chave do fenótipo supressor, Foxp3, após reconhecimento antigênico específico em presença de IL-2 e TGF-β. A indução pós-tímica de células Treg ocorre preferencialmente no nicho da mucosa intestinal e é significativamente modulada pela microbiota comensal. Apesar da célula dendrítica ser considerada o principal tipo celular envolvido na modulação da homeostase periférica de células Treg, nosso grupo e outros já demonstraram a importância de linfócitos B para geração de Treg no ambiente pós-tímico. No entanto, o papel da estimulação de linfócitos B por componentes microbianos sobre a modulação do compartimento de células Treg permanece obscuro. O objetivo deste trabalho, portanto, foi determinar a influência da sinalização MyD88-dependente nos linfócitos B, em resposta a componentes microbianos conservados evolutivamente, tanto na diferenciação in vitro de células Treg (iTreg) quanto na dinâmica populacional in vivo do compartimento de Treg presente em órgãos linfoides periféricos associados ou não à mucosa intestinal. Para determinar o impacto da sinalização do linfócito B por agonistas de receptores do tipo Toll (TLRs) sobre a geração de iTreg, células Tconv CD4+CD25-Foxp3-, purificadas de camundongos.C57BL/6 Foxp3gfp por cell sorting, foram co-cultivadas, sob condição polarizante para o fenótipo regulador, com linfócitos B esplênicos isolados de doadores WT, Tlr9-/-, Myd88-/-ou Il6-/-, na presença ou ausência de CpG ou LPS. Nossos resultados demonstraram que o potencial dos linfócitos B em induzir a diferenciação de células T reguladoras in vitro foi inibido pelo CpG e LPS de maneira dependente de MyD88. A produção da citocina IL-6 pelos linfócitos B em resposta ao CpG contribuiu significativamente para a inibição da diferenciação de iTreg. Curiosamente, esta inibição correlacionou-se com níveis reduzidos de expressão de MHC classe II e marcadores de ativação pelos linfócitos B, num processo também mediado pela IL-6. Apesar de seu contato mais frequente com componentes microbianos in vivo, células B provenientes dos linfonodos mesentéricos (BmLN) foram tão competentes em potencializar a geração de iTreg quanto as de origem esplênica. Todavia, as células BmLN privadas do contato com a microbiota in vivo, por meio do tratamento de animais WT com antibióticos, foram mais eficientes na promoção de Treg in vitro. Corroborando com esse dado, foi encontrado um maior número absoluto de células Treg CD4+Foxp3+, decorrente de proliferação aumentada, nos linfonodos mesentéricos do animal deficiente em MyD88 exclusivamente nos linfócitos B (CD19CreMyd88flox/flox). Em comparação com o controle WT, este animal também apresentou números mais baixos de Treg CD25+ no baço e menor proliferação das células Foxp3+ totais nas placas de Peyer. Portanto, demonstramos que (i) a estimulação direta do linfócito B pelos ligantes de TLR CpG e LPS inibe seu potencial pró-Treg in vitro e (ii) a sinalização MyD88 dependente intrínseca ao linfócito B participa na modulação homeostática do compartimento periférico de células Treg. Esses dados contribuem para elucidação do eixo imunorregulatório entre linfócitos B, células T reguladoras e microbiota na fisiologia imunitária.
Palavras-chave: Células T reguladoras; linfócitos B; microbiota; receptores do tipo Toll; imunorregulação; Foxp3; MyD88
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CD4+CD25+Foxp3+ regulatory T cells (Treg) are essential for the establishment of peripheral tolerance. Treg cells can originate both within the thymus and in the post-thymic compartment, and recent studies have shown the role of peripherally-induced Treg cells (pTreg) on the control of gut homeostasis and self-tolerance. In the peripheral, compartment, conventional CD4+CD25-Foxp3- T lymphocytes (Tconv) can be induced to express the key suppressive transcription factor Foxp3 upon antigen-specific recognition in the presence of IL-2 and TGF-β. The post-thymic Treg cell differentiation occurs mainly in the intestinal mucosa, where it is significantly modulated by commensal microbiota. Although dendritic cells are considered the main cell type involved in the peripheral modulation of Treg cell homeostasis, we and others have already shown the relevance of B lymphocytes to Treg induction in the post-thymic environment. However, the role of B cell-stimulation by microbial components in modulating Treg cell compartment remains unexplored. The aim of the current study, therefore, was to investigate the influence of MyD88-dependent signaling on B lymphocytes, in response to conserved microbial components, on both in vitro-induced Treg (iTreg) cell differentiation and the Treg cell dynamics in vivo in secondary lymphoid organs related or not to the intestinal mucosa. To address the effect of B cell stimulation by Toll-like receptor (TLR) agonists upon iTreg generation, FACS-purified CD4+CD25-Foxp3- Tconv cells, isolated from C57BL/6.Foxp3gfp mice, were co-cultured under iTreg-polarizing conditions with splenic B lymphocytes isolated from either WT, Tlr9-/- , Myd88-/- or Il6-/- donors, in the presence or absence of CpG or LPS. Our results demonstrated that the ability of B cells to promote iTreg was inhibited by CpG and LPS in a MyD88-dependent manner. B cell-derived IL-6 produced in response to CpG contributed significantly for the inhibition of iTreg differentiation. Surprisingly, such inhibitory effect correlated with lower expression of MHC class II and activation markers by B lymphocytes in a process mediated by IL-6. Despite its persistent interaction with microbial components in vivo, B lymphocytes derived from mesenteric lymph nodes (BmLN) were as competent as splenic B cells in driving iTreg generation. Conversely, BmLN lymphocytes became more supportive of iTreg formation when their prior contact with microbiota in vivo was inhibited by antibiotic treatment of WT mice. In accordance with these data, we found higher numbers of CD4+Foxp3+ Treg cells, associated with increased proliferation, within the mesenteric lymph nodes of mice congenitally deficient forMyD88 expression exclusively on B lymphocytes (CD19CreMyd88flox/flox). In comparison to CD19WTMyd88flox/flox control littermates, the CD19CreMyd88flox/flox mice displayed lower levels of CD25+Foxp3+ Treg cells in the spleen and reduced Foxp3+ Treg cell proliferation in the Peyer’s patches. Therefore, we demonstrated here that (i) direct TLR-dependent sensing of CpG and LPS by B cells inhibits their pro-iTreg potential and (ii) the intrinsic B lymphocyte MyD88-signaling plays a role in the modulation of Treg compartment in vivo. Our findings provide new insights to the B lymphocyte-Treg cell-microbiota immunoregulatory axis.
Keywords: regulatory T cells; B lymphocytes; microbiota; Toll-like receptors; immune regulation; Foxp3; MyD88